在细胞内,甲基转移酶复合体(writers:METTL3及METTL14等)和去甲基化酶(erasers: FTO及ALKBH5)维持RNA的m6A水平的动态变化,而m6A识别蛋白(readers: YTHDFs等)特异性识别m6A位点,介导m6A的各种生物学功能。目前,大量研究已经证实m6A修饰具有重要功能:在分子功能层面,m6A修饰影响RNA的转录、加工、运输、翻译、降解等一系列过程(Yang et al., 2018);在生物学功能层面,m6A修饰参与调控生长发育、细胞分化、癌症发生发展等生物学过程。因此,研究RNA的m6A修饰的动态变化,将在表观转录水平,解析一些基本生物学问题,揭示癌症等疾病的发生发展机制,为寻找m6A调控的新药物靶点提供依据。
随着高通量测序技术发展,特别是针对m6A修饰的MeRIP_seq(m6A_seq)技术的大量应用,研究发现人和小鼠的转录组中有大约一半的mRNA转录本具有m6A修饰,倾向于发生在mRNA的CDS和3’UTR,特别是聚集在终止密码子附近,且特异性地在RRACH基序(R代表G或A,H代表A,C或U)的A位点进行甲基化修饰(Dominissini et al., 2012; Meyer et al., 2012)。细胞内特定转录本、转录本特定区域及特定位点的m6A修饰是如何调控的,是m6A研究领域亟需解决的问题(Zhao et al., 2018)。
目前,已经证实m6A的甲基转移酶复合物选择性对mRNA的RRACH基序的A碱基进行甲基化修饰(Liu et al., 2014),且m6A甲基化修饰是共转录(co-transcriptionally)发生的,受到组蛋白H3K36me3修饰调控(Huang et al., 2019)。然而,对于两种已知去甲基化酶FTO或ALKBH5,体外实验表明,两者的去甲基化活性均没有基序选择性(Zou et al., 2016)。虽然,近期一项研究中,RNA的序列与二级结构会影响FTO的去甲基化活性(Zhang et al., 2019),但是,细胞内FTO或ALKBH5是否具有基序选择性,目前还不清楚。
FTO在生长发育中具有重要的生理功能,影响发育和多种疾病的发生,FTO在肥胖中的功能最早得到关注。2011年,芝加哥大学的何川教授课题组发现FTO能去除mRNA上的m6A修饰(Jia et al., 2011),后续的系列研究揭示了RNA上m6A修饰动态可逆性。然而,2017年康奈尔大学的Samie R Jaffery课题组报道FTO主要去除mRNA上5’帽端后的N6,2′-O-二甲基化腺嘌呤(m6Am),认为FTO底物不是RNA内部的m6A修饰位点(Mauer et al., 2017)。何川教授课题组和Jaffery教授课题组为此分别在《RNA》杂志上发表研究综述,进行了激烈的学术争论(Darnell et al., 2018; Zhao et al., 2018)。因此,需要进一步探究FTO去甲基化的作用机制,明确FTO是否具有催化底物的选择性。
前期我们与客户合作在《RNA biology》杂志(IF: 5.2)上发表了题为《The dynamics of FTO binding and demethylation from the m 6 A motifs》的研究论文。该研究工作发现FTO与RNA的结合能力较弱,但是FTO结合峰在RRACH基序有一定的富集,且FTO的RNA结合特征具有细胞特异性。在Hela细胞中,FTO与RNA的结合峰在RRACH基序上富集,并去除RRACH基序中A碱基上甲基化修饰。
在该研究中,我们首先下载了目前已经发表的FTO的CLIP_seq数据,通过多种CLIP数据分析流程进行数据分析,发现在K562及3T3-L1细胞中,FTO与RNA的结合峰在GAC或GGAC基序存在富集;然而,在HEK293T细胞中,FTO与RNA的结合却没有这种富集特征。这些结果表明,RNA中m6A修饰所在的GAC或GGAC基序在FTO与RNA的结合峰中存在的富集具有细胞特异性(如下图)。
考虑到FTO与RNA结合力太弱,我们在HeLa细胞中过表达FTO,然后进行FTO的CLIP_seq测序。结果表明,在HeLa细胞中,FTO与RNA的结合峰在GAC基序存在富集,且过表达能提高FTO与RNA在GAC基序结合的富集程度。(见下图)
接下来,我们对FTO过表达和对照的HeLa细胞,进行m6A_seq测序。结果表明,FTO过表能显著降低RNA中的m6A水平,且主要去除了GGACU基序中碱基A的甲基化修饰(见下图)。
( FTO过表达去除了RNA的GGACU基序中m6A修饰)
综上,本研究进一步证实了FTO的去甲基化酶活性,表明FTO特异的去除了RRACH基序上的m6A,研究结果支持细胞中RNA的m6A修饰是动态变化的观点,RNA甲基转移酶和去甲基化酶共同维持该表观转录修饰水平的动态平衡。研究结果为进一步探究FTO的作用机制提供了线索,为在表观转录调控水平治疗癌症、肥胖等疾病提供了理论支撑。
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References:
Darnell, R. B., Ke, S., and Darnell, J. E. (2018). Pre-mRNA processing includes N6 methylation of adenosine residues that are retained in mRNA exons and the fallacy of “RNA epigenetics”. RNA 24, 262-267.
Dominissini, D., Moshitch-Moshkovitz, S., Schwartz, S., Salmon-Divon, M., Ungar, L., Osenberg, S., Cesarkas, K., Jacob-Hirsch, J., Amariglio, N., Kupiec, M., et al. (2012). Topology of the human and mouse m6A RNA methylomes revealed by m6A-seq. Nature 485, 201-206.
Huang, H., Weng, H., Zhou, K., Wu, T., Zhao, B. S., Sun, M., Chen, Z., Deng, X., Xiao, G., Auer, F., et al. (2019). Histone H3 trimethylation at lysine 36 guides m6A RNA modification co-transcriptionally. Nature 567, 414-419.
Jia, G., Fu, Y., Zhao, X., Dai, Q., Zheng, G., Yang, Y., Yi, C., Lindahl, T., Pan, T., Yang, Y. G., and He, C. (2011). N6-methyladenosine in nuclear RNA is a major substrate of the obesity-associated FTO. Nat Chem Biol 7, 885-887.
Liu, J., Yue, Y., Han, D., Wang, X., Fu, Y., Zhang, L., Jia, G., Yu, M., Lu, Z., Deng, X., et al. (2014). A METTL3-METTL14 complex mediates mammalian nuclear RNA N6-adenosine methylation. Nat Chem Biol 10, 93-95.
Mauer, J., Luo, X., Blanjoie, A., Jiao, X., Grozhik, A. V., Patil, D. P., Linder, B., Pickering, B. F., Vasseur, J. J., Chen, Q., et al. (2017). Reversible methylation of m6Am in the 5′ cap controls mRNA stability. Nature 541, 371-375.
Meyer, K. D., Saletore, Y., Zumbo, P., Elemento, O., Mason, C. E., and Jaffrey, S. R. (2012). Comprehensive analysis of mRNA methylation reveals enrichment in 3′ UTRs and near stop codons. Cell 149, 1635-1646.
Yang, Y., Hsu, P. J., Chen, Y.-S., and Yang, Y.-G. (2018). Dynamic transcriptomic m6A decoration: writers, erasers, readers and functions in RNA metabolism. Cell Res.
Zhang, X., Wei, L. H., Wang, Y., Xiao, Y., Liu, J., Zhang, W., Yan, N., Amu, G., Tang, X., Zhang, L., and Jia, G. (2019). Structural insights into FTO’s catalytic mechanism for the demethylation of multiple RNA substrates. Proc Natl Acad Sci U S A 116, 2919-2924.
Zhao, B. S., Nachtergaele, S., Roundtree, I. A., and He, C. (2018). Our views of dynamic N6-methyladenosine RNA methylation. RNA 24, 268-272.
Zou, S., Toh, J. D., Wong, K. H., Gao, Y. G., Hong, W., and Woon, E. C. (2016). N6-Methyladenosine: a conformational marker that regulates the substrate specificity of human demethylases FTO and ALKBH5. Sci Rep 6, 25677.