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瑞兴生物RXBio

多组学技术服务与深度数据挖掘 · 从研究设计到实验验证的全流程支持
蛋白组 · 翻译后修饰

磷酸化蛋白质组

磷酸化是信号通路最直接的开关。基因表达没变、蛋白总量也没变,但激酶活性变了——这种变化只能从磷酸化位点上看出来。磷酸化蛋白质组先用金属亲和富集把占总量百分之几的磷酸肽抓出来,再用高分辨质谱定位到具体的丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸位点,回答的是哪条通路正在被激活,而不是哪个蛋白多了少了。

  • 位点级定位
  • IMAC / MOAC 富集
  • 激酶活性推断
  • 修饰组学 ≥1 mg
  • 干冰送样
1 mg蛋白起送修饰组学口径,高于定量蛋白组
10K+磷酸化位点常规项目可达到的鉴定深度
pS/pT/pY三类位点丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸全覆盖
4-6周常规项目周期
01

技术简介

蛋白质存在翻译后修饰,磷酸化是其中最重要的一类。通过磷酸化修饰可以调控蛋白质的活性、影响信号传递过程。通过磷酸基团与金属亲和的方式富集磷酸化的肽段或蛋白质后,结合高通量液质联用,检测发生磷酸化的肽段位点。

由于磷酸化修饰广泛参与各种生理和病理过程,因此磷酸化蛋白质组适用于疾病研究、生长发育、植物抗逆胁迫等研究领域。

这里要理解一件事:磷酸肽在全部肽段里只占很小一部分,不富集直接上机,绝大多数磷酸化信号会被高丰度非磷酸肽压掉。所以流程里富集这一步决定了成败——富集效率不好,后面的仪器再好也补不回来。检测到肽段之后,还要判断磷酸基团究竟挂在哪个氨基酸上(位点定位),这一步的置信度直接决定结论能不能用。

磷酸化肽段二级质谱图:b/y 离子系列标注与磷酸化位点定位,下方为肽段氨基酸序列及碎裂位点
磷酸化肽段的二级谱:靠 b/y 离子系列把磷酸基团定位到具体氨基酸
02

技术优势

特异性高,富集效率好

用 IMAC / MOAC 金属亲和方式抓磷酸肽,把占总量百分之几的目标肽段富集上来,避免被高丰度非磷酸肽压制。

高通量鉴定磷酸化肽段和蛋白

一次实验可同时拿到磷酸化蛋白、磷酸化肽段与磷酸化位点三个层级的结果,位点定位附置信度评分。

位点级分辨率

结论落到具体的 Ser / Thr / Tyr 残基上,而不是“这个蛋白被磷酸化了”。做突变验证时,知道该突哪个位点。

可推断激酶活性

用 KSEA、PTM-SEA 等算法由底物磷酸化水平反推上游激酶活性,把“通路变化”具体到“哪个激酶在动”。

可与蛋白组、转录组联合

同一批样本加做定量蛋白组,可区分“蛋白量变化”与“修饰比例变化”,这是两个完全不同的机制。

覆盖三类残基

pS / pT / pY 一并检测。酪氨酸磷酸化占比低(通常不到 1%),但是受体酪氨酸激酶类课题的关键,报告会单独列出 pY 位点。

03

技术流程

1

蛋白提取与质检

裂解提取总蛋白,BCA 定量并跑胶检查降解情况

2

还原烷基化与酶解

打开并封闭二硫键,胰酶酶解为肽段,除盐

3

磷酸肽富集

IMAC / MOAC 金属亲和富集磷酸化肽段,这是决定深度的关键步骤

4

LC-MS/MS 检测

高分辨液质联用,DDA 模式采集磷酸肽的二级谱

5

数据库检索与位点定位

检索蛋白库,计算每个磷酸化位点的定位概率,输出位点表

6

定量与激酶分析

组间差异磷酸化位点筛选、Motif 富集、KEGG 通路与激酶活性推断

两个影响结果的关键点:① 富集材料与上样量——修饰组学起送 1 mg 蛋白,就是为了保证富集后还有足够的磷酸肽上机;② 位点定位置信度——报告会给每个位点标注定位概率,写文章引用位点时优先用高置信度的那些,低置信度位点建议先做突变或 WB 验证。

04

样本要求

磷酸化的起送量比普通定量蛋白组高一个量级,原因很直接:磷酸肽占比低,蛋白量不够,富集之后就没东西了。

样本类型送样量说明
蛋白量 / 蛋白溶液≥1 mg磷酸肽在总肽段中占比通常只有百分之几,起送量比定量蛋白组高一个量级
组织常规 ≥100 mg,最少 ≥50 mg液氮速冻后 −80 ℃ 保存,干冰寄送
细胞≥1×10⁷细胞沉淀干体积 ≥20 µL;PBS 洗两遍后离心去上清,液氮速冻
血浆 / 血清不常规接收,需单独评估血浆磷酸化背景高、高丰度蛋白干扰大,建议以组织或细胞为主
IP Beads / 胶条按互作组口径干 Beads 取 3/4 送样;胶条要求条带清晰、无降解,面积 1 cm² 以内
三个容易踩的点:① 磷酸化是动态的,取样必须快——组织离体后磷酸酶会立刻开始水解,务必 10 min 内液氮速冻;做刺激实验的,到点直接投液氮,不要先放冰上;② 加磷酸酶抑制剂——裂解液里必须加(如 NaF、Na₃VO₄),漏加会让整批磷酸化信号偏低且不可恢复;③ 组间必须同步处理——不同批次裂解、不同时间富集,带来的差异可能比生物学差异还大。

完整版要求以最新版《送样规范》为准;其他样本类型(植物组织、微生物、体液)请与技术顾问确认取样量与处理方式。

05

应用案例

案例一
IF 13.3 Theranostics · 临床活检 / 胃癌

Comprehensive characterization of the phosphoproteome of gastric cancer from endoscopic biopsy specimens

从内窥镜活检标本全面表征胃癌磷酸化蛋白质组

期刊:Theranostics(IF 13.3,2024 JCR) · 发表时间:2020 年(10 卷 5 期,2115–2129) · 阅读原文:doi.org/10.7150/thno.37623

研究设计:手术切除样本会受缺血影响,模型样本又和患者体内状态有差距,所以作者改用胃镜活检组织做磷酸化组学:5 例胃癌患者的肿瘤活检与正常胃黏膜活检配对,每通道 3 块活检组织,TMT 10-plex 标记定量,甲醇/氯仿沉淀后酶解,用 IMAC(C18 StageTip)富集磷酸肽,再用 C18-SCX StageTip 分级,提高低样本量下的鉴定深度。

核心结果:鉴定到 11,840 条磷酸化肽、14,687 个磷酸化位点、4,034 个磷酸化蛋白,其中 10,162 个 class 1 位点、8,340 个位点可定量。位点构成以 pS 为主(12,062 个,82.1%),pThr 2,531 个(17.2%),pY 仅 94 个(0.7%)——这个比例是典型值,做酪氨酸磷酸化课题要提前有心理准备。还发现 394 个(3.9%)class 1 位点在 PhosphositePlus 数据库中无记录,属于新位点。鉴定深度约为此前穿刺活检研究的 2 倍(12,999 vs 6,726 个 class 1+2 位点)。

生物学发现:剔除一例明显偏离的样本后,癌与正常黏膜的磷酸化信号差异显著,癌组织中 DNA 损伤反应(DDR)相关通路显著富集,说明内镜活检能准确反映癌细胞的致癌磷酸化信号。进一步分析得到人类基因组 518 个激酶中 240 个激酶的活性谱,KSEA 与 PTM-SEA 两种算法分别找出 14 和 18 个活性显著差异的激酶,其中 ERBB2、CHEK2、ATR、CDK4、AURKA 等具有治疗意义。

这个案例说明什么:① 活检小样本也能做磷酸化组,关键在于前处理把样本损失降到最低;② 激酶活性谱是磷酸化组最有价值的产出之一,它把几百个位点的变化收敛成“哪些激酶在动”,直接对接药物靶点;③ pY 占比天然很低,如果课题核心是受体酪氨酸激酶,需要专门的 pY 富集方案,不能指望常规流程。

胃癌内镜活检磷酸化组鉴定统计:磷酸化肽 11,840、磷酸化位点 14,687、class 1 位点 10,162、可定量位点 8,340、磷酸化蛋白 4,034;pS/pT/pY 比例;位点数据库注释比例;与穿刺活检研究的深度对比
鉴定深度与本研究的位点构成
胃癌活检样本磷酸化组的 PCA 分析与 Pearson 相关性矩阵,样本 1 癌组织明显偏离并被剔除
PCA 与样本相关性:识别并剔除偏离样本
06

应用案例二

案例二
IF 15.7 Nature Communications · 方法学 / 深度图谱

Fast and deep phosphoproteome analysis with the Orbitrap Astral mass spectrometer

用 Orbitrap Astral 质谱实现快速、深度的磷酸化蛋白质组分析

期刊:Nature Communications(IF 15.7,2024 JCR) · 发表时间:2024 年 8 月(15 卷,7016) · 阅读原文:doi.org/10.1038/s41467-024-51274-0

做了什么:把新型 Orbitrap Astral 质谱与 DIA(数据非依赖性采集)结合,用于人和小鼠磷酸化蛋白质组的快速深度分析。研究用合成磷酸肽标准品和 EGF 刺激的 HeLa 细胞,与其他主流质谱平台做了基准比较,并用这套方法建立了小鼠多组织磷酸化图谱。

关键数字:半小时采集即可定位约 30,000 个人源磷酸化位点;小鼠多组织图谱在 12 小时测量内共检出 81,120 个独特磷酸化位点。基于这个数据集,作者还分析了磷酸化的序列、结构与激酶特异性背景,并用线粒体与脑相关的多个新磷酸化事件说明这个资源的发现潜力。

为什么把它放进案例:它代表磷酸化组学当前能到的深度上限与服务形态的变化——DIA + 更高扫描速度正在把磷酸化组从“一天一个样本”推向“队列级”。对客户的实际意义是:样本量大、需要跨样本严格比较的课题,现在有了比 DDA 更合适的选择;我们自己也在按这个方向配置平台。

07

常见问题

磷酸化蛋白质组和普通定量蛋白组,只能选一个吗?
钱够就一起做,信息量差一个层级。普通蛋白组告诉你蛋白多了少了,磷酸化组告诉你通路开没开——蛋白量没变而磷酸化变了,恰恰是最有意思的一类结果。同一批样本同时做,还能省一次取样和一份样本成本。
为什么起送量要 1 mg 蛋白,比普通蛋白组高这么多?
磷酸肽在总肽段中的占比通常只有百分之几。富集是有损失的,1 mg 是为了保证富集之后还能拿到足够多的磷酸肽上机。量不够的直接后果是位点数上不去,最后只能拿到几条通路,做不了激酶分析。
pY(酪氨酸磷酸化)为什么这么少?能做吗?
pY 在生理状态下通常不到全部磷酸化位点的 1%(案例一里是 0.7%),这是生物学事实,不是技术问题。如果课题核心是受体酪氨酸激酶或免疫受体信号,需要专门的 pY 富集方案(如 pY 抗体富集),做之前提前说明。
激酶活性分析靠谱吗?
它是推断,不是实测。KSEA、PTM-SEA 这类方法基于“底物被磷酸化的程度反映激酶活性”的假设,能给出优先级排序,适合用来缩小验证范围。结论要落地,还得靠激酶抑制剂实验或 WB 验证。
植物样本能做吗?
能,而且植物抗逆(干旱、盐、低温)是磷酸化组学的经典应用场景。植物组织多糖多酚、次生代谢物多,蛋白提取难度更大,建议送样量在此基础上适当增加,并提前沟通物种与组织类型。
项目周期多久?
常规 4-6 周(含富集、上机与数据分析)。样本量大、需要加做定量蛋白组联合分析或 pY 专项富集时,周期另行评估。
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