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10x Genomics · Visium HD

空间转录组 10x Visium HD

Visium HD 是 10x Genomics 的高分辨率空间转录组。它把捕获单元从常规 Visium 的 55 µm 检测点换成了 2×2 µm 的连续条形码方块,方块之间不留缝隙——整张切片都被覆盖,分辨率直接推到单细胞尺度。同一张切片上还能同时叠加 H&E 形态染色和免疫荧光(IF)蛋白信号,形态、转录、蛋白三层信息严格对齐,不用靠相邻切片去推测。

  • FFPE 兼容
  • 新鲜冰冻 FF / 固定冰冻 FxF
  • 2×2 µm 无间隙
  • 全转录组
  • 同片 H&E + IF
2×2µm连续条形码方块,单细胞尺度分辨率
6.5×6.5mm单个捕获区域尺寸,每张玻片 2 个
~18,000基因人类探针覆盖(小鼠 ~19,000),每基因 3 组探针
3类样本FFPE / 新鲜冰冻 / 固定冰冻全兼容
01

技术简介

Visium HD 是 10x Genomics 开发的高分辨率空间转录组测序技术,兼容 FFPE 和 新鲜冰冻(FF) 样本,实现单细胞水平(2×2 µm 条形码方块)的全转录组基因表达分析,且组织覆盖无间隙。

空间转录组要解决的其实是一件事:基因表达量这个数字,原本是丢掉了位置的。Visium HD 的做法是在玻片上铺一层带坐标的"抓手"——约 1100 万个 2×2 µm 的条形码方块连续排满整个捕获区域。组织切片贴上去之后,每个位置抓到的转录本都带着自己的空间条形码,测序之后再把位置还原回去,就得到了一张有坐标的表达图。

它和常规 Visium 最大的差别就在"抓手"的密度。常规 Visium 每个检测点 55 µm,一个点里往往混着 1–10 个细胞,看到的是混合信号;Visium HD 换成 2×2 µm 的连续方块,且方块之间没有间隙,理论上不存在"组织上有细胞却没被覆盖"的空洞。

对比项常规 VisiumVisium HD
捕获单元55 µm 检测点,一个点通常覆盖 1–10 个细胞2×2 µm 条形码方块
组织覆盖点与点之间有间隙连续排列、无间隙
空间尺度多细胞混合信号单细胞尺度
分析粒度按检测点统计2 µm 原始数据;8×8 µm bin 为推荐分析起点
02

技术优势

优势 1

超高空间分辨率

通过 2×2 µm 的连续寡核苷酸阵列,结合 Visium CytAssist 仪器的探针捕获技术,限制转录本扩散,实现精确转录本定位。组织切片放在 CytAssist 里对齐后再捕获,转录本不会在转移过程中"糊"开。

Visium HD 2×2 µm 连续寡核苷酸阵列与 CytAssist 探针捕获实现超高空间分辨率的示意
2×2 µm 连续阵列 + CytAssist 探针捕获,限制转录本扩散
优势 2

多组织兼容性

适用于人或小鼠新鲜冷冻、固定冷冻和 FFPE 样品,包括新鲜切片、存档样本(室温 / 4 ℃ 保存 6 个月)及封片样本。支持 H&E 染色和免疫荧光染色,同一组织切片的高分辨率空间转录组学技术可以增强 H&E 染色和免疫荧光成像的效果。

Visium HD 兼容新鲜冷冻、固定冷冻与 FFPE 三类组织样本及 H&E、免疫荧光染色的示意
FF / FxF / FFPE 三类样本兼容,存档样本同样可做
优势 3

全转录组覆盖

使用基于探针的检测方法(RNA-templated ligation,RTL),覆盖人类约 18,000 个基因、小鼠约 19,000 个基因,每个基因设计 3 组探针以提高检测灵敏度。探针法对 FFPE 里已部分降解的 RNA 比常规 poly(A) 捕获更耐受。

Visium HD 基于 RTL 探针连接化学覆盖人类约 18000 个基因、小鼠约 19000 个基因的示意
RTL 探针法:人 ~18,000 / 小鼠 ~19,000 基因,每基因 3 组探针
03

技术原理

Visium HD 玻片有两个捕获区域,每个区域为 6.5×6.5 mm,捕获区域周围有基准框架用于图像对准。捕获区域排列着连续的寡核苷酸阵列,由约 1100 万个 2×2 µm 的条形码方阵组成,这些方阵连续排列且无间隙,实现全组织覆盖和单细胞级分辨率。

每条寡核苷酸上带四段信息,各管一件事:

① 30 nt 的 poly(dT)

通过碱基互补配对,捕获带有 poly(A) 尾的探针连接产物。它负责"把东西接住"。

② 唯一分子标识符(UMI)

用于识别文库制备和测序过程中产生的重复分子——同一个原始分子的多次扩增只算一次,避免把 PCR 重复当成表达量。

③ 空间条形码(Spatial Barcode)

每个 2×2 µm 的条形码方阵具有唯一的空间条形码,用于标记转录本的空间位置信息。这是整张图的坐标来源。

④ Illumina TruSeq Read 1 测序引物

用于文库构建和双端测序,让捕获产物能直接上 Illumina 平台。

Visium HD 玻片结构示意:两个 6.5×6.5 mm 捕获区域、基准框架与 2×2 µm 连续条形码方阵
Visium HD 玻片:2 个 6.5×6.5 mm 捕获区域 + 基准框架 + 2×2 µm 连续条形码方阵
04

实验流程

组织切片的制备过程包括组织切片、脱蜡(适用于 FFPE 组织)、染色和在载玻片上成像。然后将两张组织切片和一张包含两个捕获区域的 Visium HD 切片放入 CytAssist 仪器中,使组织切片与两个 Visium 捕获区域对齐。仪器内部会捕获明场图像,以便为数据分析提供空间定位,随后对组织进行透化处理,并将转录组探针转移到 Visium HD 切片上。探针延伸后,将样品洗脱并转移到新的试管中,构建基因表达文库。最终的基因表达文库将进行测序。

1

切片与染色

组织切片;FFPE 组织需脱蜡;随后染色并在载玻片上成像

2

CytAssist 上机

两张组织切片与一张 Visium HD 玻片放入仪器,切片与两个捕获区域对齐

3

明场成像与透化

仪器内部捕获明场图像用于空间定位,随后对组织进行透化

4

探针转移与延伸

转录组探针转移到 Visium HD 切片上,探针延伸

5

洗脱与建库

样品洗脱并转移到新试管中,构建基因表达文库

6

测序

基因表达文库上机测序,满捕获区域建议 ≥2.75 亿 read pairs

Visium HD 实验流程图:切片制备、染色成像、CytAssist 对齐、透化、探针转移延伸、洗脱建库与测序
Visium HD 全流程:切片制备 → CytAssist 对齐 → 透化捕获 → 探针转移延伸 → 洗脱建库 → 测序
05

实测数据

实测 1 · FFPE 乳腺癌导管原位癌全转录组图谱

Visium HD 对该 FFPE 导管原位癌人类乳腺癌样本进行分析,构建了无偏倚的全转录组图谱,并识别了肿瘤微环境中的主要细胞类型和状态。

Visium HD 对人类乳腺癌 FFPE 导管原位癌样本的分析结果:全转录组空间图谱与肿瘤微环境细胞类型、状态识别
FFPE 人乳腺癌 DCIS:无偏倚全转录组图谱与微环境细胞状态

实测 2 · 同一组织切片的组织学与空间分析

同一组织切片的组织学和空间分析。A、B 分别显示同一人类结肠癌切片的 H&E 染色 (A) 和基于图形的聚类 (B)。C、D 分别显示同一小鼠小肠切片的 alpha-SMA(红色)、WGA(绿色)和 DAPI(蓝色)的免疫染色 (C) 以及基于图形的聚类 (D)。黑色箭头表示在连续切片 1 (E、F) 中存在单个浆细胞,JCHAIN 表达;在连续切片 2 (G、H) 中不存在浆细胞,JCHAIN 表达也未表达。

Visium HD 同一组织切片的 H&E 染色与基于图形的聚类对比,以及小鼠小肠免疫染色与聚类结果
组织学与空间聚类一一对齐:人结肠癌 H&E / 小鼠小肠免疫染色

实测 3 · 高质量且可重复的数据

使用 Visium HD 获得高质量且可重复的数据。A–C 分别显示人类结肠癌的 H&E 染色 (A) 及其 UMI 图 (B) 和 UMI 分布图 (C)。D、E 分别显示健康人类胰腺 2 个重复样本的 UMI 图 (D) 以及重复样本之间 UMI 分布的高度相关性 (E)。

Visium HD 数据质量与可重复性:人结肠癌 H&E、UMI 图与 UMI 分布图,以及健康人胰腺两个重复样本的高度相关性
重复样本 UMI 分布高度相关,数据可重复

实测 4 · 转录本精确定位(约 95% 落在预期区域)

使用 CytAssist 探针捕获技术实现转录本的精确定位。H&E 染色与标记基因表达的叠加显示转录本在预期位置的准确定位 (A)。基于图的小鼠小肠聚类 (B)。E 图中黑框内的区域被放大以显示 H&E 染色 (C),其中红色区域表示预期包含表达 Lyz1 和 Defa21 转录本的潘氏细胞的隐窝区域,黄色区域表示不表达潘氏细胞标记物的相邻肌肉层。H&E 与潘氏细胞标记基因的叠加 (D)。值得注意的是,约 95% 的 Lyz1 和 Defa21 转录本正确定位在包含潘氏细胞的隐窝区域中。

Visium HD 定位精度验证:H&E 与 Lyz1、Defa21 潘氏细胞标记基因叠加,约 95% 转录本正确定位在隐窝区域
约 95% 的 Lyz1 / Defa21 转录本定位在预期的隐窝区域

以上实测图与说明引自 10x Genomics Visium HD 公开数据(人 FFPE 乳腺癌、人结肠癌、小鼠小肠、健康人胰腺)。

06

样本要求

项目要求说明
兼容样本类型核心人或小鼠的 FFPE、新鲜冰冻(FF)、固定冰冻(FxF) 组织切片含 mRNA 的组织切片即可;已制好的玻片切片、存档 FFPE 蜡块均可上机
切片厚度支持 3–10 µm;常规 5 µm(FFPE)、10 µm(FF / FxF)10x 在 3–10 µm 范围内做过验证,内部常规用 5 µm;特殊组织可提前沟通优化
组织尺寸目标区域需落在 6.5 × 6.5 mm 捕获区域内,每张玻片 2 个捕获区域组织大于捕获区域时,需在取材或切片阶段圈定感兴趣区域
RNA 质量(FFPE)建议 DV200 > 30%低于 30% 的样本在既往版本中也出过可用数据,但建议先做质检评估再决定是否上机
存档样本FFPE 蜡块:10x 已测试至 5 年;玻片上已切组织:室温 / 4 ℃ 保存 6 个月更久的样本建议先评估 DV200,再决定是否投入正式实验
染色方式H&E(形态学)与 免疫荧光 IF(蛋白共检)均兼容同一张切片共检,形态与分子信息严格配准;蛋白共检需提前确认抗体
测序深度组织铺满整个捕获区域时,建议 ≥2.75 亿 read pairsRNA 丰度高的组织可继续加大测序量以提升灵敏度;具体按课题问题与组织类型确定
样本形态与运输蜡块 / 玻片切片 / OCT 包埋块三种形态均可,寄送条件不同寄样前请与技术顾问确认样本形态、固定方式与运输条件后再发货
关于立项前确认:Visium HD 对组织形态与 RNA 完整度比较敏感,尤其是存档 FFPE 样本。建议在项目启动前先做 DV200 评估;样本寄送前请与技术顾问确认形态(蜡块 / 玻片切片 / OCT 包埋块)、固定方式与运输条件,避免到场后发现不符合上机要求。
07

分析内容

标准分析 STANDARD

  1. 数据质控与图像配准Space Ranger 解条形码、序列比对、组织区域识别、H&E 图像配准
  2. 多尺度 bin 定量2 µm 原始数据输出;提供多种 bin 尺寸,8×8 µm 为推荐起点
  3. 降维聚类与注释PCA / UMAP 聚类,Marker 基因与区域类型注释
  4. 空间差异表达区域间 / 分组间差异基因与空间表达模式
  5. 功能富集GO / KEGG / GSEA,通路层面解释空间分区

高级分析 ADVANCED

  1. 自定义 bin 与细胞核分割Space Ranger 支持 10–100 µm 整数 bin;基于 H&E 的核分割获取类单细胞信号
  2. 细胞类型去卷积联合 scRNA-seq 参考图谱,估计每个 bin 的细胞组成
  3. 空间邻域与细胞通讯邻域富集分析、配体–受体互作推断
  4. H&E 多模态联合病理形态注释与分子分区叠加,IF 蛋白共检数据联合
  5. 连续切片整合与 3D 重构多切片拼接对齐,三维表达图谱

8×8 µm bin 之所以作为推荐起点:哺乳动物多数细胞直径在 8–100 µm,8×8 µm 的 bin 每个格子里能装下更多转录本,聚类和差异表达的统计功效更稳,同时仍保持单细胞尺度。

08

应用案例

案例一
鼻息肉 CRSwNP · GZMK⁺ CD8⁺ T 细胞与成纤维细胞互作

Granzyme K⁺ CD8⁺ T cells interact with fibroblasts to promote neutrophilic inflammation in nasal polyps

颗粒酶 K 阳性 CD8 阳性 T 细胞与成纤维细胞相互作用促进鼻息肉中的中性粒细胞炎症

期刊:Nature Communications(IF 15.7) · 发表时间:2024 年 11 月
阅读原文:doi.org/10.1038/s41467-024-54685-1

研究目的:常规 Visium 平台无法达到单细胞分辨率(55 µm 的检测点包含 1–10 个细胞),难以精准解析细胞间的相互作用,而 Visium HD 平台能提供单细胞尺度的空间分辨率(2×2 µm 的条形码方块且无间隙)。因此作者使用该平台对更多样本进行分析,以更精确地观察免疫细胞和结构细胞在鼻组织中的空间分布情况,进而揭示细胞间的相互作用,尤其是 GZMK⁺ CD8⁺ T 细胞与成纤维细胞之间的关系,为深入理解 CRSwNP 的发病机制提供更有力的证据。

Visium HD 分析鼻息肉组织:GZMK 阳性 CD8 阳性 T 细胞在固有层的空间分布及其与成纤维细胞的邻域富集
Visium HD 下鼻息肉组织的免疫细胞空间分布与细胞互作

细胞分布与组成

对 4 例对照样本和 6 例鼻息肉(NP)样本进行分析后发现,在 NP 组织的固有层中鉴定并可视化了 CD8T_GZMK 和 CD8T_GZMB 细胞。NP 组出现大量免疫细胞浸润,其中巨噬细胞、浆细胞、B 细胞和 CD4⁺ T 细胞的数量比 CD8T_GZMK 更多。与对照下鼻甲(CIT)组相比,NP 组中 CD8T_GZMK、B 细胞和 CD4⁺ T 细胞的比例增加,而平滑肌细胞的比例显著下降,不过成纤维细胞或上皮细胞的比例未发生明显变化。

细胞间相互作用

通过 Squidpy 进行邻域富集分析,发现 CD8T_GZMK 与成纤维细胞之间存在正向邻域富集关系,即这两种细胞在空间上距离更近,且这种关系具有特异性,其他免疫细胞与成纤维细胞之间并未展现出更强的邻域富集关系。此外,基于 Visium HD 数据的配体–受体分析表明,GZMK⁺ CD8⁺ T 细胞与成纤维细胞之间通过 CXCR4–CXCL12 轴进行细胞通讯,进一步证实了两者之间的密切联系。

09

常见问题

Visium HD 玻片的捕获区域架构是什么?
Visium HD 空间基因表达玻片包含两个 6.5 × 6.5 mm 的捕获区域,其中一片连续的寡核苷酸排列成数百万个 2 × 2 µm 条形码方块,无间隙,可实现单细胞尺度的空间分辨率。
哪些样品与 Visium HD 兼容?
Visium HD 与含有 mRNA 的人和小鼠新鲜冷冻、固定冷冻和福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)组织切片兼容。这包括存档的 FFPE 块和载玻片上的预切片组织。
哪些组织染色剂与 Visium HD 兼容?
Visium HD 空间基因表达与苏木精和伊红(H&E)染色兼容,用于形态学信息;与免疫荧光(IF)染色兼容,用于蛋白质共检测。
组织切片要多厚?
官方支持范围为 3–10 µm,内部常规使用 5 µm。实际操作中 FFPE 常用 5 µm、新鲜冰冻与固定冰冻常用 10 µm;不同组织的透化行为有差异,遇到特殊组织建议先做小范围条件确认。
拿到的是 2 µm 数据还是 8 µm 数据?
两个都有。原始数据集以 2 µm 输出;同时提供若干种 bin 尺寸,其中 8 × 8 µm 是推荐的可视化与分析起点。原因是 8×8 µm 的 bin 每个格子里转录本更多,聚类和差异表达的统计功效更好,而哺乳动物多数细胞直径在 8–100 µm,这个粒度仍然算单细胞尺度。Space Ranger 也支持在 10–100 µm 之间按 2 µm 整数自定义 bin。
测序要测多深?
组织铺满整个捕获区域时,官方建议最低 2.75 亿 read pairs。实际还要看课题需要多少测序饱和度;RNA 丰度高的组织想再多挖一些低表达基因,可以在这个基础上继续加量。
FFPE 蜡块放了很久还能做吗?
先看 DV200。官方建议 > 30%,低于 30% 的样本在既往版本中也出过可用数据,但不建议直接押上去。10x 已测试过最长 5 年的 FFPE 蜡块;玻片上已切组织的保存建议是室温或 4 ℃、6 个月内。老样本建议先做质检评估,再决定是否投入正式实验。
项目周期一般多长?
样本与 RNA 质检合格后,切片、CytAssist 上机、建库测序约 4-5 周,标准分析约 2 周;细胞核分割、自定义 bin、连续切片 3D 重构等高级分析按需求另行约定。
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