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细胞功能实验

基因改完之后,机制研究总要落到四个问题上:细胞长得快不快、死不死、跑不跑、能不能成管。这 8 个实验就是回答它们的标准动作。同一批细胞、同一套对照做完,图与图之间才对得上——不然一个说活力下降、一个说周期没变化,就不好解释了。

  • CCK-8 增殖与毒性
  • 平板克隆形成
  • 细胞周期
  • Annexin V/PI 凋亡
  • Transwell 侵袭
  • Transwell 迁移
  • 细胞划痕
  • 成管实验
8项常规表型检测项目
0·24·48·72h增殖实验四个时间点
4象限凋亡分群判读
3类交付:数据·报告·英文方法
01

先看你要回答哪个问题

你想回答的问题做哪个读出来的指标
处理之后,活着的细胞还剩多少CCK-8 增殖/毒性450 nm 吸光度,换算成相对细胞活力(%)
单个细胞能不能自己长成一团平板克隆形成克隆数、克隆形成率(%)
细胞卡在细胞周期的哪一步细胞周期(PI/RNase 流式)G0/G1、S、G2/M 各期占比
死的是早期凋亡、晚期凋亡,还是坏死Annexin V/PI 双染流式四象限占比、总凋亡率
细胞能不能降解基质胶、穿过去Transwell 侵袭穿膜细胞计数
不铺胶,细胞自己跑得动吗Transwell 迁移穿膜细胞计数
单层细胞愈合得多快细胞划痕无细胞面积随时间的变化、愈合率
内皮细胞能不能连成管腔成管实验小管总长度、分支数、节点数
三处最常混的地方,先说清楚:① CCK-8 下降不等于"死得多"——它读的是活细胞总量,增殖变慢和死亡增加都会让它掉,想分清就得配凋亡或周期;② 迁移与侵袭只差一层胶——铺了基质胶,细胞必须先分泌 MMPs 把胶降解才能过膜,才叫侵袭;③ 划痕与 Transwell 迁移不是二选一——划痕看的是整片单层的愈合速度,便宜直观但会被增殖干扰,Transwell 数的是单个细胞的穿膜能力,终点单一但更"干净"。这三处在对应的实验里还会各说一次。

这些表型实验通常接在细胞模型构建后面:先敲低、过表达或敲除,确认模型质控过关,再上表型。顺序反了,表型一好看就没人去查模型真假。

Group A

增殖与死亡:细胞还长不长、死不死

这一组的四个实验都在讲"细胞数量为什么变了",但角度不同:CCK-8 是此刻有多少活细胞,克隆形成是单个细胞长期能不能长起来,细胞周期是细胞停在哪一步,凋亡是细胞以什么方式死。三个和增殖有关的指标不是重复——审稿人往往要看到两种以上互相印证,只有一个 CCK-8 的"增殖受抑"很容易被追问。

02

CCK-8:此刻还剩多少活细胞

CCK-8 里的核心成分是 WST-8。它被活细胞线粒体里的脱氢酶还原,变成水溶性的橙黄色甲瓒(formazan),颜色深浅与活细胞数量成正比,在 450 nm 读吸光度就能定量。细胞增殖越快、活细胞越多,颜色越深;细胞毒性越大,颜色越浅。

和 MTT 比,差别在"要不要溶":MTT 的甲瓒是脂溶性的,得用 DMSO 溶解才读得出,多一步、也有毒性;WST-8 的产物直接溶在培养基里,加进去孵育、上机读数就行。另外 MTT 的线性范围窄(吸光度 1 左右),CCK-8 到 3 以内基本还在线性段,做药物梯度时不容易"顶到头"。

CCK-8 原理示意:WST-8 经 1-Methoxy PMS 传递电子,被活细胞脱氢酶还原为橙黄色甲瓒,最大吸收约 460 nm
WST-8 被活细胞脱氢酶还原为水溶性甲瓒,读 450 nm(甲瓒最大吸收约 460 nm)
CCK-8 实测结果:HTR-8 细胞在 0、30、50 mM 葡萄糖处理下 0、24、48、72 小时的相对细胞活力柱状图
实测:HTR-8 细胞高糖处理(0/30/50 mM 葡萄糖),0、24、48、72 h 四个时间点;0 h 三组无差异(ns),24 h 起高糖组显著下降(*~****),时间越长差距越大
已发表案例:A549 细胞敲低 DDX17 后的 CCK-8 增殖曲线,以及与对照相比升高的凋亡率柱状图
与我司合作发表:A549 敲低 DDX17,A 为 CCK-8 增殖曲线(24 h p=0.0114、48 h p=0.0021),B 为同批细胞的凋亡率(***)
He C, Zhang G, Lu Y, et al. PeerJ, 2022, 10: e13895.
我们为什么要做四个时间点:0、24、48、72 h 同一批细胞、同一天铺板,起始细胞量一致,趋势才拉得出来。只做一个终点,看到的是"某个时刻的差值",说不了"增殖被抑制";有 0 h 这个起点,还能顺手排除"铺板时细胞数就不均"这种低级问题。另外实测里常见的情况是 24 h 就显著、48 h 差距更大——高糖/药物这类处理,时间窗选错了结论会反。
读图注意:吸光度超过 3 就要稀释样本或缩短显色时间,否则读数落在平台期,组间差异会被压平。
03

平板克隆形成:单个细胞能不能自己长起来

单个细胞在体外连续分裂 6 代以上,后代堆成 50 个细胞以上、直径 0.3–1.0 mm 的一团,才算一个克隆。克隆形成率 = 长成克隆的细胞数 ÷ 接种细胞数,本质是"接种存活率"。

为什么不能只做 CCK-8?因为克隆形成率同时反映贴壁能力和增殖活力——贴上去的细胞不一定都能长成克隆,但能长成克隆的一定是贴得住、也长得动的。CCK-8 只是把当时孔里的活细胞数读出来,看不出"这一个细胞还有没有后续"。做药物长期处理、或者要证明"增殖能力被永久性削弱",克隆形成比 CCK-8 更站得住。

平板克隆形成实测:siNC 对照组与 si-Target 敲低组各 3 个培养孔的结晶紫染色克隆照片,右侧为克隆形成率定量柱状图
实测:siNC 对照与 si-Target(靶基因敲低)各 3 孔,结晶紫染色;右侧定量显示克隆形成率由约 29% 降至约 19%(**)
这实验最容易翻在接种密度上:铺太密,克隆长到连片,数不出来也分不清来源;铺太稀,对照组只有零星几个,统计没意义。密度要按细胞大小和增殖速度定,通常先做一次预实验,选"每孔 100–200 个克隆、彼此不接触"的量。另外染色前一定要洗净、固定到位,否则背景发紫,克隆边界看不清。
04

细胞周期:细胞卡在哪一步

细胞从一次分裂结束到下一次分裂结束,走完间期(G0/G1 → S → G2)和分裂期(M)。要判断细胞停在哪儿,最常用的办法是量每个细胞里的 DNA 含量:PI 染双链 DNA,荧光强度与 DNA 量成正比,再用流式逐个读。

读出来就两峰一谷:G0/G1 期是 2N(左边那个峰),S 期在 2N–4N 之间(中间那段连续分布),G2/M 期是 4N(右边那个峰)。PI 同时也会染 RNA,所以必须先用 RNase 把 RNA 消化掉,不然 S 期比例会虚高。

细胞周期实测:Control 与处理组各周期占比堆叠柱状图,以及 PI 染色流式直方图
实测:Control 与处理组;处理组 G0/G1 占比由约 45% 升至约 60%,S 期相应下降(**/***),右为 PI 直方图
方法本身有两个限度,写文章时别硬说:G0 与 G1 的 DNA 含量都是 2N,光靠 PI 分不开;G2 与 M 也都是 4N,同样分不开——所以报告里写的是"G0/G1 期"和"G2/M 期",不是单独某一期。要真分 G0 和 G1,得加 Ki-67 或 Hoechst 双染。另外取样时细胞汇合度别超过 80%,长太满细胞会自己往 G0 走,读出来的"G1 阻滞"可能是假的。
05

流式凋亡:死的方式不一样,意义也不一样

正常细胞的磷脂酰丝氨酸(PS)只待在内膜侧。凋亡早期,PS 会翻到外膜,Annexin V 能结合 PS,所以荧光标记的 Annexin V 就是凋亡的"外翻探针"。但膜一破,Annexin V 也能钻进去染坏死细胞——单靠它分不清凋亡和坏死,所以要加 PI:PI 进不了完整细胞膜,只能染膜已经破了的细胞。

两个一起染,流式图就分成四群:左上 Q1 Annexin V−/PI+ 是坏死,右上 Q2 双阳是晚期凋亡(继发性坏死),左下 Q3 双阴是活细胞,右下 Q4 Annexin V+/PI− 是早期凋亡。报"总凋亡率"时,通常是 Q2 + Q4。

Annexin V 与 PI 双染检测凋亡的原理示意:活细胞、早期凋亡细胞与继发性坏死细胞的染色差异,右侧为流式四象限点图示例
原理:PS 外翻结合 Annexin V,PI 只进破膜细胞;右侧为四象限点图示例(Q1 坏死/Q2 晚期凋亡/Q3 活细胞/Q4 早期凋亡)
流式凋亡实测:SERBP1 过表达 HeLa 细胞与对照的 Annexin V-PE/7-AAD 点图及凋亡率柱状图
实测:SERBP1 过表达 HeLa,Annexin V-PE/7-AAD 双染;早期凋亡(右下)由 10.0% 升至 20.2%,总凋亡率显著上升(*)

上图为与我司合作发表文章的 Fig.1C 与凋亡率定量:Zhou J, Chen W, He Q, et al. PeerJ, 2022, 10: e14084.

两个细节决定这张图能不能用:① 贴壁细胞要用不含 EDTA 的胰酶消化,EDTA 会螯合钙离子,而 Annexin V 结合 PS 是钙依赖的,消化狠了或时间长了,活细胞也会假阳性;② 一定要把上清一起收——晚期凋亡和坏死的细胞已经飘起来了,只收贴壁的,Q2 那一格就被人为压低了。这两点做不到,四象限看着漂亮,数字也是错的。
Group B

迁移、侵袭与血管生成:细胞跑不跑得动

肿瘤转移研究离不开这一组。三个"跑"的实验各有各的说服力:划痕看单层整体愈合、能看动态,Transwell 迁移数单个细胞穿过膜的能力,Transwell 侵袭再叠一层基质胶,要求细胞先降解胶才能过。加上内皮细胞的成管实验,就能把"血管生成"这条线也接上。

06

Transwell 侵袭:先降解,再穿过去

装置是上下两室,中间隔一张 8 µm 孔径的聚碳酸酯膜。侵袭比迁移多一步:膜的上侧要先铺一层基质胶,用来模拟细胞外基质。细胞想进下室,必须先分泌基质金属蛋白酶(MMPs)把胶降解掉,才有孔可钻。穿过膜的细胞固定、结晶紫染色,显微镜下计数——数出来的就是侵袭能力。

这个"多一步"很关键:它把"能跑"和"能破坏组织屏障"分开了。药物或基因处理之后,迁移没变、侵袭掉了,说明影响的是 MMPs 分泌或基质降解,而不是运动能力本身——这个区分在写机制时往往是整段讨论的支点。

Transwell 小室结构示意:上层培养液、聚碳酸酯膜、下层培养液,小室置于普通细胞培养板中
装置:上室种细胞,下室给含血清培养基,中间是 8 µm 孔径的聚碳酸酯膜(侵袭实验再铺一层基质胶)
Transwell 侵袭实测:shNC 与 sh-Target 组穿膜细胞结晶紫染色显微照片,右侧为穿膜细胞数定量柱状图
实测(以 MDA-MB-231 为例):shNC 与 sh-Target,各展示 3 个视野;穿膜细胞数由约 275 降至约 95(***)
批间差主要来自胶:基质胶铺多厚、有没有气泡、凝固是否均匀,直接决定结果能不能重复。所以我们铺胶是同一批胶、同一体积、冰上操作,铺完在培养箱里定型后再种细胞。计数也不取"一个视野定胜负"——每组随机取 5 个视野计数取平均,图上展示其中 3 个。
07

Transwell 迁移:不铺胶,只问跑得动吗

同一个装置,膜上不铺胶。上室种细胞、下室加含 FBS 的培养基或特定趋化因子,细胞顺着营养梯度往膜孔里钻、穿到下侧——数穿过去的细胞量,就是迁移能力。8.0 µm 的孔径对多数肿瘤细胞和免疫细胞都合适。

迁移和侵袭常被写在同一段里,但结论不能混:迁移是"运动能力",侵袭是"运动 + 降解基质"。如果只做了迁移就写"抑制了细胞侵袭",是这两年被审稿人挑得比较多的一类问题。

Transwell 迁移实测:OE-NC 与 OE-Target 组穿膜细胞结晶紫染色显微照片,右侧为迁移细胞数定量柱状图
实测(以 AGS 为例):OE-NC 与 OE-Target,各展示 3 个视野;迁移细胞数由约 235 降至约 78(**)
两个容易忽略的变量:血清批次和饥饿处理。血清里的生长因子浓度不一样,细胞跑的速度就不一样,所以同一批实验要用同一批血清;上室一般先做 6–12 h 无血清饥饿,把"被血清直接刺激"的影响排掉,再上小室。这两步不做,两次重复之间能差出一大截。
08

细胞划痕:一片单层愈合得多快

细胞长满成单层后,用枪头在中间划一道,洗掉划下来的细胞,形成一个没有细胞的空白区域,然后定点、定时拍照,量这块空白面积怎么缩小。优点是便宜、直观、能看动态过程——同一个孔从 0 h 到愈合全程都有记录,不用重复铺板。

缺点也明确:它同时受迁移和增殖影响,还受血清、细胞密度影响。所以要么在低血清条件下做,要么加增殖抑制剂(如 Ara-C)把增殖摁住,否则"愈合加快"到底是跑得快还是长得快,说不清。另外划痕宽度不均、边缘细胞受损,也会带来假阳性——这也是为什么我们要在同一条划痕上标定边界、按面积而不是按"目测宽度"算。

细胞划痕实测:划痕后不同时间点的显微照片,黄色线标注无细胞区域边界,右侧为无细胞面积随时间变化的线性回归曲线
实测:划痕后定点拍照(A–D,黄线为图像识别出的无细胞边界),ImageJ 量面积;愈合段线性回归斜率约 1.38×10⁴ µm²/h,R² = 0.99
怎么让这个实验更有说服力:不要只放"0 h 和 24 h 两张对比图"。像上图这样按时序连续取样、做出面积-时间曲线,斜率就是愈合速率,R² 还能说明过程是否线性;投稿时审稿人更认这种带定量的图。另外同一个孔至少拍 3 个固定位置(可在皿底画标记点)——划痕边缘的宽度本来就不均匀,固定位置拍照,不同时间点之间才比得了。
09

成管实验:内皮细胞能不能连成网

血管形成时,内皮细胞先伸出突起连成条索,再围成管腔。体外把内皮细胞(HUVEC、HMEC-1 等)铺在基质胶或胶原上,条件合适时它们会在几小时内自己连成网——这就是成管实验(tube formation)。药物或基因处理如果抑制管腔形成、或让已经形成的管断裂,就从侧面说明影响了血管生成。

定量不是靠"看着像不像",而是用软件量:小管总长度、分支数、节点数、覆盖面积。这几个指标一起看,比单报一个"管腔数"更稳——有的处理会让管变短但分支不变,只报数量就看不出这个变化。

体外成管实验流程示意:内皮细胞接种到基质胶表面、贴附、逐步连接形成管腔网络
流程:接种 → 贴附 → 连成管腔,通常 4–6 h 内完成
成管实验实测:NC 与 siLGALS1 组内皮细胞管腔形成的显微照片,右侧为小管总长度定量柱状图
实测:NC 与 siLGALS1 组;敲低后管腔网络明显稀疏,小管总长度由约 4250 降至约 3400(p = 0.0043)
拍照时间点必须固定:成管是个动态过程,2 h 和 6 h 看到的网络结构完全不一样,早拍还没连上、晚拍已经开始变粗、退化。所以同一批实验要在同一时间点(我们常用 4–6 h)统一拍照。另外胶要铺得薄而均匀、不能有气泡,气泡处细胞会绕着长,量出来的数据就偏了。
10

交付什么

不管做其中一项还是全部八项,交付的内容是同一套——目标是能直接写进文章和标书,而不是一张"看着挺好看"的图。

A

原始数据

B

实验报告

C

英文材料方法

D

结果图

11

常见问题

细胞量要多少、要多长时间?
取决于细胞类型、分组数和重复次数,差异很大,写死一个数字反而误导。方案阶段会给出每组需要的细胞量、铺板规格与时间节点,你按节点安排后续实验即可。
能保证做出显著差异吗?
不能,也不该保证——生物学结果取决于你的处理和细胞本身。我们能保证的是过程质控:起始细胞量一致、组间同批试剂同批血清、每组 3 个复孔、关键结论做独立重复,结果不显著时也会把原始数据给你,一起看是处理无效还是条件没摸对。
只有细胞和药物,前期处理你们能做吗?
可以。加药、转染、慢病毒感染、缺氧或高糖等处理都能接。也可以只做检测这一段:你自己处理完把板或样本给我们,我们做染色、上机和出图。
这些表型结果怎么和测序对上?
关键是同一批细胞、同一处理。常见做法是表型先定(比如确认活力下降、凋亡升高),再从同一批样本里取样做转录组测序或蛋白组,这样测序结果解释的是同一个生物学状态。如果表型和测序用的是两次独立实验,写文章时就得说明批次差异。
划痕和 Transwell 迁移,做一个够不够?
看期刊要求。多数文章两者都放,因为一个看单层整体愈合、一个看单细胞穿膜,互为佐证。预算或细胞量有限时,建议优先 Transwell 迁移(终点单一、受增殖干扰小);划痕更适合需要展示动态过程的场合。
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