| 你想回答的问题 | 做哪个 | 读出来的指标 |
|---|---|---|
| 处理之后,活着的细胞还剩多少 | CCK-8 增殖/毒性 | 450 nm 吸光度,换算成相对细胞活力(%) |
| 单个细胞能不能自己长成一团 | 平板克隆形成 | 克隆数、克隆形成率(%) |
| 细胞卡在细胞周期的哪一步 | 细胞周期(PI/RNase 流式) | G0/G1、S、G2/M 各期占比 |
| 死的是早期凋亡、晚期凋亡,还是坏死 | Annexin V/PI 双染流式 | 四象限占比、总凋亡率 |
| 细胞能不能降解基质胶、穿过去 | Transwell 侵袭 | 穿膜细胞计数 |
| 不铺胶,细胞自己跑得动吗 | Transwell 迁移 | 穿膜细胞计数 |
| 单层细胞愈合得多快 | 细胞划痕 | 无细胞面积随时间的变化、愈合率 |
| 内皮细胞能不能连成管腔 | 成管实验 | 小管总长度、分支数、节点数 |
这些表型实验通常接在细胞模型构建后面:先敲低、过表达或敲除,确认模型质控过关,再上表型。顺序反了,表型一好看就没人去查模型真假。
这一组的四个实验都在讲"细胞数量为什么变了",但角度不同:CCK-8 是此刻有多少活细胞,克隆形成是单个细胞长期能不能长起来,细胞周期是细胞停在哪一步,凋亡是细胞以什么方式死。三个和增殖有关的指标不是重复——审稿人往往要看到两种以上互相印证,只有一个 CCK-8 的"增殖受抑"很容易被追问。
CCK-8 里的核心成分是 WST-8。它被活细胞线粒体里的脱氢酶还原,变成水溶性的橙黄色甲瓒(formazan),颜色深浅与活细胞数量成正比,在 450 nm 读吸光度就能定量。细胞增殖越快、活细胞越多,颜色越深;细胞毒性越大,颜色越浅。
和 MTT 比,差别在"要不要溶":MTT 的甲瓒是脂溶性的,得用 DMSO 溶解才读得出,多一步、也有毒性;WST-8 的产物直接溶在培养基里,加进去孵育、上机读数就行。另外 MTT 的线性范围窄(吸光度 1 左右),CCK-8 到 3 以内基本还在线性段,做药物梯度时不容易"顶到头"。
单个细胞在体外连续分裂 6 代以上,后代堆成 50 个细胞以上、直径 0.3–1.0 mm 的一团,才算一个克隆。克隆形成率 = 长成克隆的细胞数 ÷ 接种细胞数,本质是"接种存活率"。
为什么不能只做 CCK-8?因为克隆形成率同时反映贴壁能力和增殖活力——贴上去的细胞不一定都能长成克隆,但能长成克隆的一定是贴得住、也长得动的。CCK-8 只是把当时孔里的活细胞数读出来,看不出"这一个细胞还有没有后续"。做药物长期处理、或者要证明"增殖能力被永久性削弱",克隆形成比 CCK-8 更站得住。
细胞从一次分裂结束到下一次分裂结束,走完间期(G0/G1 → S → G2)和分裂期(M)。要判断细胞停在哪儿,最常用的办法是量每个细胞里的 DNA 含量:PI 染双链 DNA,荧光强度与 DNA 量成正比,再用流式逐个读。
读出来就两峰一谷:G0/G1 期是 2N(左边那个峰),S 期在 2N–4N 之间(中间那段连续分布),G2/M 期是 4N(右边那个峰)。PI 同时也会染 RNA,所以必须先用 RNase 把 RNA 消化掉,不然 S 期比例会虚高。
正常细胞的磷脂酰丝氨酸(PS)只待在内膜侧。凋亡早期,PS 会翻到外膜,Annexin V 能结合 PS,所以荧光标记的 Annexin V 就是凋亡的"外翻探针"。但膜一破,Annexin V 也能钻进去染坏死细胞——单靠它分不清凋亡和坏死,所以要加 PI:PI 进不了完整细胞膜,只能染膜已经破了的细胞。
两个一起染,流式图就分成四群:左上 Q1 Annexin V−/PI+ 是坏死,右上 Q2 双阳是晚期凋亡(继发性坏死),左下 Q3 双阴是活细胞,右下 Q4 Annexin V+/PI− 是早期凋亡。报"总凋亡率"时,通常是 Q2 + Q4。
上图为与我司合作发表文章的 Fig.1C 与凋亡率定量:Zhou J, Chen W, He Q, et al. PeerJ, 2022, 10: e14084.
肿瘤转移研究离不开这一组。三个"跑"的实验各有各的说服力:划痕看单层整体愈合、能看动态,Transwell 迁移数单个细胞穿过膜的能力,Transwell 侵袭再叠一层基质胶,要求细胞先降解胶才能过。加上内皮细胞的成管实验,就能把"血管生成"这条线也接上。
装置是上下两室,中间隔一张 8 µm 孔径的聚碳酸酯膜。侵袭比迁移多一步:膜的上侧要先铺一层基质胶,用来模拟细胞外基质。细胞想进下室,必须先分泌基质金属蛋白酶(MMPs)把胶降解掉,才有孔可钻。穿过膜的细胞固定、结晶紫染色,显微镜下计数——数出来的就是侵袭能力。
这个"多一步"很关键:它把"能跑"和"能破坏组织屏障"分开了。药物或基因处理之后,迁移没变、侵袭掉了,说明影响的是 MMPs 分泌或基质降解,而不是运动能力本身——这个区分在写机制时往往是整段讨论的支点。
同一个装置,膜上不铺胶。上室种细胞、下室加含 FBS 的培养基或特定趋化因子,细胞顺着营养梯度往膜孔里钻、穿到下侧——数穿过去的细胞量,就是迁移能力。8.0 µm 的孔径对多数肿瘤细胞和免疫细胞都合适。
迁移和侵袭常被写在同一段里,但结论不能混:迁移是"运动能力",侵袭是"运动 + 降解基质"。如果只做了迁移就写"抑制了细胞侵袭",是这两年被审稿人挑得比较多的一类问题。
细胞长满成单层后,用枪头在中间划一道,洗掉划下来的细胞,形成一个没有细胞的空白区域,然后定点、定时拍照,量这块空白面积怎么缩小。优点是便宜、直观、能看动态过程——同一个孔从 0 h 到愈合全程都有记录,不用重复铺板。
缺点也明确:它同时受迁移和增殖影响,还受血清、细胞密度影响。所以要么在低血清条件下做,要么加增殖抑制剂(如 Ara-C)把增殖摁住,否则"愈合加快"到底是跑得快还是长得快,说不清。另外划痕宽度不均、边缘细胞受损,也会带来假阳性——这也是为什么我们要在同一条划痕上标定边界、按面积而不是按"目测宽度"算。
血管形成时,内皮细胞先伸出突起连成条索,再围成管腔。体外把内皮细胞(HUVEC、HMEC-1 等)铺在基质胶或胶原上,条件合适时它们会在几小时内自己连成网——这就是成管实验(tube formation)。药物或基因处理如果抑制管腔形成、或让已经形成的管断裂,就从侧面说明影响了血管生成。
定量不是靠"看着像不像",而是用软件量:小管总长度、分支数、节点数、覆盖面积。这几个指标一起看,比单报一个"管腔数"更稳——有的处理会让管变短但分支不变,只报数量就看不出这个变化。
不管做其中一项还是全部八项,交付的内容是同一套——目标是能直接写进文章和标书,而不是一张"看着挺好看"的图。
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